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核型分析通常包括两方面内容：1、确定某一物种的染色体数目。2、辨析每条染色体的特征。一般采用分散良好、形态清楚而典型的有丝分裂中期的染色体标本，由于染色体制片方法的不同，细胞所处生理状态的不同，用药物对细胞进行处理等因素的存在都可使观察结果产生偏差。所以必须观察分析多个个体、多个细胞。一般至少要统计30个以上的分散良好、染色体形态清晰的有丝分裂中期细胞，如这些细胞的染色体数都恒定一致，即可认定为该物种的染色体数目。在染色体计数的基础上，选择几个典型的细胞，辨析染色体组中每条染色体的特征。通常用染色体的相对长度、着丝粒的位置、随体的数目和长度等指标描述一条染色体的特征。可采用传统方法或用Adobe Photoshop来进行核型分析。在本次核型分析实验中，我们主要采用传统方法。
如何制作永久性的玻片标本？
（1）图中B细胞内着丝点分裂，染色体移向细胞两极，所以细胞处于有丝分裂后期．
（2）由于细胞处于有丝分裂中期时，染色体的形态比较稳定，数目比较清晰，便于观察，所以遗传学上做染色体组型分析时常常是观察图中的C细胞时期．
（3）由于A细胞位于视野的上方，而在显微镜中看到的是倒立的像，所以要把图中的A细胞移到视野中央，具体操作是把装片向上移动，使A细胞移到视野中央．
（4）植物细胞有丝分裂装片的制作流程为解离→漂洗→染色→制片，所以要制备这样的玻片标本，要选择的材料、药品以及有关操作有：
| 洋葱表皮 | 洋葱根尖 | 龙胆紫溶液 | 甲基蓝 | 健那绿 | 筛选 | 漂洗 | 冲洗 |
| √ | √ | √ | |||||
| 纤维素酶 | 胰蛋白酶 | 盐酸-酒精液 | 加热 | 切片 | 压片 | 解离 | 离心 |
| √ | √ | √ |
故答案为：
（1）后
（2）中期染色体的形态比较稳定，数目比较清晰，便于观察
（3）把装片向上移动
（4）要选择的材料、药品以及有关操作有：
| 洋葱表皮 | 洋葱根尖 | 龙胆紫溶液 | 甲基蓝 | 健那绿 | 筛选 | 漂洗 | 冲洗 |
| √ | √ | √ | |||||
| 纤维素酶 | 胰蛋白酶 | 盐酸-酒精液 | 加热 | 切片 | 压片 | 解离 | 离心 |
| √ | √ | √ |
高中生物必修一的重要试验
帮你借鉴的，望能对你有点帮助。
1．涂片法
涂片法是将材料均匀地涂布在载玻片上的一种制片方法。
涂片材料有单细胞生物、小型藻类、血液、细菌培养液、动植物的疏松组织、精巢、花药等。
涂片时应注意：（1）载玻片必须清洁。（2）载玻片要持平。（3）涂层须均匀。涂抹液滴在载玻片中间偏右，用解剖刀刃或牙签等涂匀。（4）涂层要薄。用另一载玻片作推片，沿滴有涂抹液的载玻片面（二载玻片夹角应为30°～45°）由右向左轻轻推动，涂成均匀一薄层。（5）固定。如需固定可用化学固定剂或干燥法（细菌）固定。（6）染色。细菌用亚甲基蓝，血液用瑞氏染液。染色液要盖住全部涂面。（7）冲洗。用吸水纸吸干或烤干。（8）封片。长期保存用加拿大的树胶片片。
2．压片法
压片法是将生物材料置于载玻片和盖片之间，施加一定压力，将组织细胞压散的一种制片方法。
压片法的一般过程：（1）取材。观察细胞分裂，应选取细胞分裂旺盛、新鲜的组织细胞为材料。如根尖、茎尖分生组织、骨髓细胞、花药（花粉母细胞）。精巢（精母细胞）等。（2）固定。材料固定可根据需要而定，取材后立即压片观察，可不作单独固定处理（与染色同步进行）；取材后不立即视察，可将材料用固定液（一般用醋酸酒精固定液）固定。固定2～24小时（因材料而异）后用95％乙醇清洗，保存于70％乙醇中，备用。（3）离析。对细胞不易散开材料用水解分离液（如1N HCl或盐酸一酒精液）处理，一般处理6～20min，解离后经水漂洗后方能染色。（4）染色。染色剂种类很多。观察染色体常用醋酸洋红染色液染色。（5）压片。将材料放在载玻片上，加一滴清水或染液，盖上盖玻片用拇指轻轻压片。（6）观察。压片后，即可在显微镜下观察。
3．装片法
装片法是将生物材料采取整体封固制成玻片标本的方法，用此法可制成临时或永久装片。
装片材料有：微小生物如衣藻、水绵、变形虫、水螅，植物的叶表皮；昆虫的翅、足、口器，人的口腔上皮细胞等。
装片法制作时应注意：（1）手持载玻片时，应注意持平，或放在平台上。滴水时水量要适当，以恰好被盖玻片盖满为度。（2）应将材料用解剖针或镊子展开不使重叠，展平在同一平面上。（3）放盖玻片时，从一侧慢慢盖在水滴上，防止出现气泡。（4）染色时，将一滴染色液滴在盖玻片的一侧，用吸水纸从另一侧吸引，使盖玻片下的标本均匀着色。着色后，用同样的方法，滴一滴清水，把染色液吸出后，在显微镜下观察。
内容较多，分两部分实验一 观察DNA和RNA在细胞中的分布P26实验原理：DNA 绿色，RNA 红色实验步骤步骤 器材与试剂 作用与原理（1）制片 ①将牙签刮下的口腔上皮细胞置于载玻片上0.9%的NaCl溶液滴②载玻片烘干 1 0.9%的NaCl溶液防止细胞破裂，2 维持细胞形态。3 烘干使细胞固定在载玻片上（2）水解 8%HCl中30℃保温5分钟 盐酸能改变细胞膜的通透性，加速染色剂进入细胞，同时使染色体中的DNA与蛋白质分离。（3）冲洗 用蒸馏水缓流冲洗10分钟 （4）染色 2滴吡罗红甲基绿染色5分钟 甲基绿使DNA染上绿色吡罗红使RNA染上红色（5）观察 显微镜下观察 实验结果: 细胞核呈绿色,细胞质呈红色.分布：真核生物的DNA主要分布在细胞核中，线粒体和叶绿体内也含有少量的DNA；RNA主要分布在细胞质中。 实验二 检测生物组织中还原糖、脂肪和蛋白质P18实验原理：还原糖 砖红色 脂肪 红色 蛋白质 紫色1、还原糖的检测什么是还原性糖：还原性糖：有还原性基团--游离醛基或酮基的糖；如葡萄糖、果糖、麦芽糖、乳糖。非还原性糖：淀粉、纤维素、蔗糖、糖元。（1）材料的选取：还原糖含量高，白色或近于白色，如苹果，梨，白萝卜。（2）试剂：斐林试剂（甲液：0.1g/mL的NaOH溶液，乙液：0.05g/mL的CuSO4溶液），现配现用。（3）步骤：取样液2mL于试管中→加入刚配的斐林试剂1mL（斐林试剂甲液和乙液等量混合均匀后再加入）→水浴加热2min左右→观察颜色变化（浅蓝色→棕色→砖红色）2、脂肪的检测（1）材料的选取：含脂肪量越高的组织越好，如花生的子叶。（2）步骤：制作切片（切片越薄越好）将最薄的花生切片放在载玻片中央 ↓ 染色（滴苏丹Ⅲ染液2～3滴切片上→2～3min后吸去染液→滴体积分数50%的酒精洗去浮色→吸去多余的酒精） ↓制作装片（滴1～2滴清水于材料切片上→盖上盖玻片）↓ 镜检鉴定（显微镜对光→低倍镜观察→高倍镜观察染成橘**的脂肪颗粒）3、蛋白质的检测（1）试剂：双缩脲试剂（A液：0.1g/mL的NaOH溶液，B液：0.01g/mL的CuSO4溶液）（2）步骤：试管中加样液2mL→加双缩脲试剂A液1mL，摇匀→加双缩尿试剂B液4滴，摇匀→观察颜色变化(紫色) 实验三 用显微镜观察多种多样的细胞P71、显微镜的使用：取镜→安放→对光→压片→观察→收放。（1）低倍镜使用：（观察任何标本都必须先用低倍镜，且标本应透明）（2）高倍镜使用：先使用低倍镜确定目标→移动装片，使目标位于视野中央→转动转换器，换用高倍镜→调焦（转动细准焦螺旋）(视野较暗,可调反光镜或光圈)2、显微镜使用注意事项：（1）成像特点：放大倒立的虚像。（2）放大倍数计算：物镜的放大倍数×目镱的放大倍数。放大倍数指的是物体的长或宽。（3）物像的移动方向与装片的移动方向相反。（4）低倍镜下成像特点：物像小、细胞数目多、视野亮。 高倍镜下成像特点：物像大、细胞数目少、视野暗。（5）物镜和目镜的判断方法：物镜有螺纹，目镜无螺纹。（6）放大倍数的判断方法： 目镜：镜头长放大倍数小，镜头短放大倍数大。物镜：镜头长放大倍数大，镜头短放大倍数小。 物镜与装片之间的距离：距离近放大倍数大，距离远放大倍数小。（7）显微镜的有关性能参数。最重要的性能参数是分辨率，而不是放大倍数。1．高倍镜的使用时注意（1）低倍镜使用过程中，下降镜筒时必须双眼侧视镜筒，防止镜头撞到玻片。（2）低倍镜找到物像后，换上高倍镜时，观察过程中只能使用细准焦螺旋。
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